Les analyseurs de flux extracellulaire (plateformes de respirométrie de type Seahorse) et les électrodes à oxygène de type Clark sont des outils standard pour mesurer l'effet du BAM-15 sur le taux de consommation d'oxygène (OCR) dans des préparations cellulaires et de mitochondries isolées. Les chercheurs mesurent généralement la respiration basale, puis introduisent le BAM-15 pour évaluer l'ampleur de la respiration découplée (consommation d'oxygène non couplée à la synthèse d'ATP), suivie de titrages à l'oligomycine et aux inhibiteurs de la chaîne de transport d'électrons afin de résoudre pleinement le profil bioénergétique et de confirmer le mécanisme de transport des protons.

Des colorants potentiométriques fluorescents (tels que le TMRM ou le JC-1) associés à la cytométrie en flux ou à la microscopie à fluorescence sont utilisés pour mesurer les variations du potentiel de membrane mitochondrial après exposition au BAM-15, ce qui permet aux chercheurs de quantifier le degré de dissipation du gradient de protons sur une gamme de concentrations. Ces mesures sont généralement couplées à des dosages parallèles des niveaux d'ATP afin de caractériser la relation entre les variations du potentiel de membrane et les conséquences bioénergétiques en aval dans le modèle cellulaire spécifique étudié.

La recherche comparative en bioénergétique a examiné le BAM-15 par rapport à d'autres composés de la classe des protonophores, avec un intérêt de recherche particulier pour les profils de sélectivité distinguant les effets sur la membrane mitochondriale interne de ceux sur la membrane plasmique. Ces études utilisent généralement des tests parallèles d'OCR et de potentiel de membrane sur plusieurs composés découplants à des concentrations équivalentes, ce qui permet aux chercheurs de caractériser la puissance relative, les fenêtres de sélectivité et les relations structure-activité au sein de cette classe de composés.